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      基因片段敲除

      CRISPR-Cas9系統介導的基因敲除目前已廣泛應用于基因組功能水平研究,常見的基因敲除策略有兩種,一種是單個sgRNA介導的基因敲除,通過CRISPR-Cas9系統在編碼基因外顯子產生的InDels造成基因移碼突變,進而達到基因敲除的目的,因此,此種基因敲除策略僅限于編碼基因的敲除;另一種是兩條sgRNA介導的基因敲除,通過兩條sgRNA作用于目的片段兩側,實現目的片段序列刪除,進而實現目的基因的敲除,此種基因敲除策略不僅適用于編碼基因,同樣適用于非編碼功能元件和ncRNA基因,這些非編碼DNA序列無法通過移碼突變方式達到功能失活的目的,必須依賴于功能片段的缺失(圖1)。因此,通過片段刪除的方式實現基因的敲除,也是一種應用廣泛的基因敲除策略。

      服務標準

         客戶需提供 安升達交付  交付周期 
       標準服務 基因序列和NCBI ID
      宿主細胞
      細胞株培養條件
      基因敲除(片段刪除)單克細胞一株
      細胞cofA文件
      測序結果
       10-12周
       附加服務  -  額外單克隆交付  -
       Western blot/FACS抗體  敲除細胞株蛋白水平驗證結果  1-2周
       -  敲除細胞株mRNA水平驗證  1-2周

       

       
      *注:一般由客戶提供宿主細胞系,如果需要由安升達提供宿主細胞系,需要額外收費。
      *如果宿主細胞使用的是常規培養基,如:RPM1640、DMEM、MEM等無需客戶提供,如果是特殊培養基及添加物,需要客戶提供。

       

      基因片段刪除細胞系構建流程:

      基因片段刪除細胞系構建流程

      案例分析1:編碼基因片段刪除-The stability and oncogenic function of LIN28A are regulated by USP28.
       
      編碼基因的敲除有兩種常見策略,一種為Crispr/Cas9作用于外顯子產生InDels導致移碼突變,另一種方法是對編碼基因外顯子片段刪除。本案例中USP28基因為編碼基因,一種去泛素化酶,通過與LIN28A蛋白相互作用并穩定其半衰期。USP28通過其去泛素化活性,逆轉蛋白酶體降解作用,可拮抗LIN28A蛋白降解。通過在外顯子2中設計兩條sgRNA進行外顯子2片段刪除,實現對USP28基因功能的敲除,并驗證了敲除后NCCIT細胞中LIN28A蛋白量降低[1]。

      USP28基因片段刪除

      圖2USP28基因片段刪除[1]
       
      案例分析2:非編碼基因(LncRNA)片段刪除-Efficient CRISPR/Cas9-Mediated Versatile, Predictable, and Donor-Free Gene Knockout in Human Pluripotent Stem Cells
       
      長鏈非編碼RNA(Long non-coding RNA, lncRNA)是長度大于 200 個核苷酸的非編碼 RNA。研究表明, lncRNA 在劑量補償效應、表觀遺傳調控、細胞周期調控和細胞分化調控等眾多生命活動中發揮重要作用,成為遺傳學研究熱點。本案例中MALAT1基因即為lncRNA基因,僅包含一個外顯子,案例從方法學角度在iPSC細胞中對lncRNA基因進行敲除,通過不同sgRNA組合對MALAT1基因外顯子片段進行刪除,刪除序列大小分別為500bp,1000bp,3000bp, 8000bp. 刪除效率見下圖表格,純合刪除效率隨著刪除片段越大整體上呈下降趨勢[2]。因此,對較大的lncRNA,刪除外顯子的大小要根據基因的序列特征選擇合適的刪除片段,才能較大概率獲取純合基因刪除單克隆細胞系。

      MALAT1基因片段刪除

      圖3 MALAT1基因片段刪除[2]
       
      案例分析3:長片段基因刪除(>10kb)-Efficient in vivo deletion of a large imprinted lncRNA by CRISPR/Cas9.
       
      基因長片段的刪除通常應用于lncRNA基因刪除, 且大多應用活體水平的操作。本案例介紹在活體水平刪除Rian基因,此基因大小為57.8kb,包含21個外顯子,案例中設計刪除了包含23kb范圍內的14個外顯子, 實驗結果統計表明,25個小鼠中含有4個顯示Rian基因刪除[3],但是均為雜合敲除。對于片段刪除,總的趨勢是隨著片段越大,刪除效率越低,大片段刪除效率范圍為總體約1%至13%[4] [5], 可能的原因可能受基因染色體背景影響、DNA修復機制影響。此外,獲取純合刪除拷貝困難因素還受基因拷貝數多少等影響。

      Rian基因片段刪除

      圖4 Rian基因片段刪除[3]
       
      總而言之,相比通過CRISPR/Cas9產生InDels而介導基因敲除,通過兩條sgRNA介導DNA片段刪除具有更廣泛更可靠的特點,具體表現在(1)可以對非編碼基因進行敲除;(2)可以在基因組水平上對DNA片段進行刪除;這些都決定了CRISPR/Cas9系統介導的片段刪除具有更廣泛、更可靠的特點,必將作為基因功能研究的優先選擇之一。 
       
      參考文獻:
      [1] Haq S, Das S, Kim D H, et al. The stability and oncogenic function of LIN28A are regulated by USP28[J]. Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-Molecular Basis of Disease, 2019, 1865(3): 599-610.
      [2] Liu Z, Hui Y, Shi L, et al. Efficient CRISPR/Cas9-mediated versatile, predictable, and donor-free gene knockout in human pluripotent stem cells[J]. Stem cell reports, 2016, 7(3): 496-507.
      [3] Han J, Zhang J, Chen L, et al. Efficient in vivo deletion of a large imprinted lncRNA by CRISPR/Cas9[J]. RNA biology, 2014, 11(7): 829-835..
      [4] He Z, Proudfoot C, Mileham A J, et al. Highly efficient targeted chromosome deletions using CRISPR/Cas9[J]. Biotechnology and bioengineering, 2015, 112(5): 1060-1064.
      [5] Kraft K, Geuer S, Will A J, et al. Deletions, inversions, duplications: engineering of structural variants using CRISPR/Cas in mice[J]. Cell reports, 2015, 10(5): 833-839.
       

      安升達提供的CRISPR/Cas9技術服務的授權來自Broad研究所。

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